miércoles, 15 de junio de 2011

practicas

                                                  Practica No.1
                                                       


                                              Cámara de neubauer

                                          Enfoque de objetivos 4, 10,40


                                                Introducción:

El alumno iniciara la búsqueda de conocimientos prácticos por medio de la investigación  y aprendizaje, tomando en cuenta los conocimientos esenciales.



                                                     Objetivo:

El alumno aprenderá a localizar correctamente los cuadros y líneas de la cámara de la neubauer que a simple vista no se observan  teniendo como objetivo los materiales de laboratorio (microscopio).


                                                     Desarrollo:

  1. colocar la cámara de neubauer en la platina, enfocar en el objetivo 4x/0.1 5121005 (rojo).




  1. mover con la platina la cámara de neuBauer, mover y aclarar con el condensador. Objetivo 10x/0.25 5121010 (amarillo).






  1. aclara y enfocar, mover plantilla con la cámara de neubauer, mover revolver al objetivo 40x/0.65 5121040 (azul).











           Practica No.2

          Introducción:

Esta es la segunda práctica que realizaremos se llama pesos y medidas y pesaremos objetos con una balanza granataría.


                                   Objetivo:

El objetivo de esta práctica es aprender a utilizar la balanza granataría pesando en ella instrumentos del laboratorio.

                                   Desarrollo:

Nuestra mesa de trabajo tuvo que realizar la segunda practica llamada pesos y medidas.

En esta práctica tuvimos que pesar los siguientes objetos:


ü      matraz
ü      vidrio de reloj
ü      espátula
ü      caja petri
ü      probeta
ü      pipeta(Sally)
ü      pipeta (graduada)
ü      pipeta(Pasteur)
ü      vaso de precipitado(chico)
ü      vaso de precipitado(mediano)
ü      vaso de precipitado(grande)

                                                Desarrollo:

Materiales De los cuales surgieron los siguientes pesos

ü      matraz-131.9gr
ü      vidrio de reloj-14.7gr
ü      espátula-49.6gr
ü      caja petri-80.3gr
ü      probeta-131.8gr
ü      pipeta(Sally)-3.7gr
ü      pipeta (graduada)-22.7gr
ü      pipeta(Pasteur)-5.2gr
ü      vaso de precipitado(chico)-26.5gr
ü      vaso de precipitado(mediano)-51.2gr
ü      vaso de precipitado(grande)-112gr








                                Practica No.3
Técnica de esterilización por calor húmedo (autoclave)

                                            Objetivo: 

El alumno técnico Laboratorista Clínico, tiene por deber analizar y aprender a manejar el siguiente material que es de suma importancia para la superación y dar un paso más adelante en lo que es el método de esterilización ya que el alumno debe experimentar y observar para realizar un buen trabajo/practica en la especialidad  de Laboratorio: Análisis Clínicos.
                                          Introducción: 

La técnica de esterilización por calor-húmedo sirve para el manejo de la autoclave, el cual se utiliza para esterilizar una diversidad de equipos de laboratorio, en cristalería, plásticos, metales, y reactivos, por lo mismo es una práctica de mucha atención y exploración de el alumno hacia el objetivo de la dicha práctica.

Materiales:
-Autoclave
-Agua Destilada
-Corriente Eléctrica
-Mesa de Laboratorio
-Guantes para altas temperaturas

                                       Desarrollo:

“técnica de esterilización por calor-húmedo” (Autoclave) , comenzamos por reconocer las partes de la autoclave como manometro, el cual marca la temperatura, contiene una maguera corrugada, también en su interior se encuentra una olla de aluminio con dos asas.En la parte exterior logramos encontrar un dispositivo de encendido y apagado, y un cable que se conecta a la corriente eléctrica.

Después de haber esperado 24 minutos, revisamos si el agua que esta contenida dentro de la autoclave, estuviese hirviendo. Al ver que no estaba hirviendo lo suficiente, volvimos a cerrar, a diferencia de que cerramos totalmente y en forma cruzada, esperando 20 minutos a que el manómetro este a 5lbs.

Al ya haber llegado a las 15 lbs. se presión, se tiene que controlar, el manómetro, constante en 15 lbs. por otro lapso, al  ya haberse completado, la válvula de escape se accionara manualmente para expulsar la presión y que el manómetro llegue a 0 lbs.





                                   Practica No.4

                                    Introducción:
En este próximo procedimiento, intentamos o mejor dicho practicamos en el laboratorio usando las pipetas.


                                      Objetivo:
El objetivo fundamental de esta práctica es el de conocer el uso y manejo de las pipetas en el laboratorio de análisis clínicos.


                                         Materiales:

ü      pipeta graduada
ü      pipeta volumétrica
ü      pipeta de Sally
ü      pipeta Pasteur
ü      pipeta de tomas
ü      pipeta automática
ü      agua destilada


                                        Desarrollo:
El paso numero uno fue el de verter 1 ml de agua en cada tubo de ensaye y compararlo con las capacidades de las diferentes pipetas ya que en el equipo de trabajo (materiales) contábamos con distintas pipetas de diferente graduación.

El paso número dos, fue el de verter 19 mililitros en la caja petri y después pipetear un micro litro en la caja petri con la pipeta Pasteur,  es decir una gota de agua.

El pasó número tres, fue que en la placa de vidrio para inmunología vertimos una gota de agua con la pipeta Pasteur es decir 6 micro litros de agua, por ser los orificios que tiene la placa de vidrio.







                                     Practica No.5



                                      Introducción:
Dentro del laboratorio se le facilitara la actividad al alumno para el proceso y la elaboración de soluciones y reactivos los cuales podrán utilizar en sus practicas de acuerdo al tema solicitado.


                                     Objetivo:
Se aprenderá a realizar soluciones, utilizando soluto y solvente lo que le dará el conocimiento para aplicarlo en los procesos prácticos.

                                         
                                       Materiales:
ü      vidrio de reloj
ü      tubos de ensaye
ü      matraz
ü      espátula
ü      vaso de precipitado
ü      pipeta graduada
ü      papel secante
ü      balanza
ü      papel cubre mesa



                                      Desarrollo:
Al entrar al laboratorio un profesor explico como podíamos pesar mas rápido la azúcar, comenzamos pesar la azúcar como explicaron y hicimos un recipiente de papel el cual pesamos en la balanza y peso 2.5 luego le echamos azúcar al recipiente , en la probeta echamos agua y la azúcar la batimos hasta que quedo totalmente disuelta después de eso con la pipeta absorbimos el agua con cada una de las medidas ,al final  lavamos los materiales los secamos y entregamos.


domingo, 12 de junio de 2011

tincion de gram

La tinción de Gram o coloración de Gram es un tipo de tinción diferencial empleado en microbiología para la visualización de bacterias, sobre todo en muestras clínicas. Debe su nombre al bacteriólogo danés Christian Gram, que desarrolló la técnica en 1884. Se utiliza tanto para poder referirse a la morfología celular bacteriana como para poder realizar una primera aproximación a la diferenciación bacteriana, considerándose Bacteria Gram positiva a las bacterias que se visualizan de color moradas y Bacteria Gram negativa a las que se visualizan de color rosa o rojo.


  • Con la ayuda de un mechero, flamear un asa bacteriológica y esperar que enfríe un poco.
  • Tomar el asa (previamente flameada) y con ésta tomar un poco de muestra.
  • Una vez obtenida una pequeña cantidad de la muestra (con el asa), hacer que ésta tenga contacto con una lámina portaobjetos, la cual servirá para depositar la muestra contenida en el asa.
  • Con el asa (conteniendo la muestra) sobre la lámina portaobjetos, proceder a realizar la extensión de la muestra en el portaobjetos mediante movimientos giratorios (dar vueltas con el asa) sobre la lámina, de tal forma que al terminar la extensión, tengamos como producto una espiral en la parte media de la lámina.
  • Esperar que seque al aire libre o ayudarse con la llama de un mechero para fijar la muestra, teniendo en cuenta que el calor no debe ser directo (sólo se pasa por la llama), puesto que el calor excesivo puede cambiar la morfología celular de las bacterias a observar. El calor deseable es aquél en el que el portaobjetos sea apenas demasiado caliente para ser colocado sobre el dorso de la mano.

[editar] Tinción

Con violeta cristal, violeta de genciana, azul de metileno o en todo caso tinta china utilizando una cantidad suficiente de dicho colorante sobre la muestra, como para lograr cubrirla por completo. Se deja actuar al colorante por 1 minuto. Esta tinción de 1 minuto está dada para trabajar a una temperatura ambiente de 25 °C.

[editar] Enjuague

Al transcurrir el minuto, se debe enjuagar la lámina conteniendo la muestra con agua corriente. Para realizar el lavado, se debe tener en cuenta que el chorro de agua NO debe caer directamente sobre la muestra, ésta debe caer sobre la parte superior de la lámina que no contiene muestra. El chorro debe ser un chorro delgado, aproximadamente de medio a un milímetro de espesor. También el enjuague se debe realizar poniendo la lámina portaobjetos en posición inclinada hacia abajo... La solución de cristal violeta, se recomienda sea al 1%

[editar] Mordiente

Una vez enjuagado el portaobjetos, se aplica como mordiente yodo o lugol durante 3 minuto más. El mordiente es cualquier sustancia que forme compuestos insolubles con colorantes y determine su fijación a las bacterias.

[editar] Decoloración

Pasado el minuto de haber actuado el mordiente, el frotis se decolora con etanol al 75 %, etanol al 95 %, acetona o alcohol-acetona, hasta que ya no escurra más líquido azul. Para esto se utiliza el gotero del frasco del decolorante. Se van añadiendo cantidades suficientes del decolorante, hasta lograr que éste salga totalmente transparente, es decir, hasta que ya no escurra más líquido azul.

[editar] Lavado y secado

Lavar con agua para quitar los residuos de decolorante y esperar que seque la lámina al aire libre o con la ayuda de la llama de un mechero de la forma anteriormente descrita.

[editar] Tinción de contraste

Una vez que la lámina ya secó, procedemos a teñir nuevamente, pero esta vez se va a utilizar un colorante de contraste como por ejemplo la safranina, dejar actuar durante 1 minuto.

[editar] Nuevo enjuague

Pasado el minuto correspondiente, se procede a enjuagar la lámina con agua, se escurre el agua sobrante y se seca en la forma anteriormente descrita.
De esta manera, ya tendremos listo el frotis para su respectiva observación microscópica.

 Bacterias resistentes a la tinción Gram

La siguientes bacterias de naturaleza grampositiva, tiñen como gramnegativas:

martes, 31 de mayo de 2011

Moleculas: Organicas e Inorganicas

Compuesto orgánico

Los compuestos orgánicos son sustancias químicas que contienen carbono, formando enlaces covalentes carbono-carbono o carbono-hidrógeno. En muchos casos contienen oxígeno, nitrógeno, azufre, fósforo, boro, halógenos y otros elementos.











Compuesto inorgánico
Se denomina compuesto inorgánico a todos aquellos compuestos que están formados por distintos elementos, pero en los que su componente principal no siempre es el carbono, siendo el agua el más abundante.

ETAPA: Analitica,Pre-Analitica Y Post-Analitica

ETAPA PREANALÍTICA :
Asegura que se efectúe con calidad todo procedimiento anterior a la prueba tanto dentro como fuera del laboratorio.




ETAPA ANALITICA:
Este paso es clave en la Planificación Estratégica porque nos va a permitir conocer cuáles son
los principales problemas con los que nos enfrentamos, y a partir de los cuales deberemos
buscar las soluciones específicas. Requiere de un análisis realista, en él se basarán luego las
estrategias con las que se intentará revertir la situación apuntando al logro de los objetivos
propuestos.




 


ETAPA POST-ANALITICA:
es la entrega de los resultados al paciente.

lunes, 18 de abril de 2011

Conversiones

                                                 
Porcentaje

%  soluto/ Solvente * 100

                                                                               75/185 =  .405
Datos:                                             
 75 = soluto
185 = solvente                                     .45*100 = 40.500





Datos:                                                    95/ 235 = .404
95 = soluto
235 = solvente                                      .44 *100 = 40.100
                                      
       

Datos:                                                   46/482= .282
46=soluto                                               
482=solvente                                        .282*100= 28.200         



Datos:                                                  117/482= .2427
117= soluto
482= solvente                                      .2427/100= 24.2700  


Datos:                                                    19/126= .1507
19= soluto          
126= solvente                                        1508*100= 15.0700 
 

Datos:                                                    45/180= .25
45=soluto
180= solvente                                         .25*100= 25.00




%  soluto/ Solvente * 100

Datos:                                                       90/180= .500
90= soluto
180= solvente                                          .500*100= 50.000



Datos:                                                       35/180= .194
35= soluto
180= solvente                                           194*100= 19.400                           



Datos:                                                        55/325=.169
55=soluto
325=solvente                                           .169*100= 16.90



Datos:                                                           70/220= .318
70=soluto
220=solvente                                               .318*100= 31.800



Datos:                                                           330/1000= .33
330=soluto
1000=solvente                                              0.33*100= 33.00


Datos:                                                           85/425=0.2
85=soluto
425=solvente                                               0.2*100=20.0


Datos:                                                           125/735=.17
125=soluto
735=solvente                                                .17*100=17.00

Datos:                                                           43.35/136=.31
43.35=soluto
136=solvente                                                .31*100=31.00
%  soluto/ Solvente * 100


Datos:                                                        23.5/142= .1654
23.5=soluto
142=solvente                                            .1654*100= 16.5400



Datos:                                                       48.5/167=.29
48.5=soluto
167=solvente                                              .29*100=29.00



Datos:                                                       19/113=.168
19=soluto
432=solvente                                             .168*100=16.800



Datos:                                                           94/432=.217
94=soluto
432=solvente                                                .217*100=21.700

martes, 12 de abril de 2011

Molaridad

   En química, la concentración molar (también llamada molaridad) es una medida de la concentración de un soluto en una disolución, o de alguna especie molecular, iónica, o atómica que se encuentra en un volumen dado.

 Sin embargo, en termodinámica la utilización de la concentración molar a menudo no es conveniente, porque el volumen de la mayor parte de las soluciones depende en parte de la temperatura, debido a la dilatación térmica.

Este problema se resuelve normalmente introduciendo coeficientes o factores de corrección de la temperatura, o utilizando medidas de concentración independiente de la temperatura tales como la molalidad.[1



Ejemplos de cálculos relacionados con la molaridad.

Ejercicio 1. Calcule la molaridad de una solución que contiene 6.00 g de NaCl (MM 58.44) en 200 ml de solución.



Ejercicio 2. Calcule el número de moles y el número de gramos de KMnO4 (MM 158.0) en 3.00 litros de una solución 0.250 M.


Ejercicio 3. Cuántos mililitros de H2SO4 concentrado al 95% (r = 1.84 g/mL) se necesitarán para preparar 2.5 l de solución 2 M de este ácido.





Sistema mecánico



Son una serie de piezas donde se instalan los lentes y posee mecanismos de movimiento controlado para el enfoque, las piezas que forman este sistema son:

Resorte o eje de inclinación, tornillo fijo que une la columna al brazo y se conoce también como "charnela", permite inclinar el microscopio y poder observar con facilidad las preparaciones.

Pilar o columna, llamada también asa o brazo que sirve para mantener las diversas partes, sostiene el tubo en su porción superior y por el extremo inferior se une a la base.